PRODUCT CLASSIFICATION
產(chǎn)品分類蛋白激酶將磷酸基團(tuán)從ATP轉(zhuǎn)移到蛋白多肽底物上的絲氨酸、蘇氨酸或酪氨酸殘基,直接影響目標(biāo)的活性和功能。放射性研究表明,真核細(xì)胞中大約30%的蛋白經(jīng)過磷酸化修飾。這一關(guān)鍵的翻譯后修飾調(diào)控了廣泛的細(xì)胞活性,包括細(xì)胞周期 、分化、代謝和神經(jīng)元通訊。此外,異常的磷酸化事件與許多疾病狀態(tài)相關(guān)。在評(píng)估磷酸化時(shí),選擇的方法可能會(huì)有所不同,這取決于多個(gè)因素,包括提出的具體問題以及特殊儀器或試劑的可用性。如何檢測(cè)蛋白磷酸化,本文簡(jiǎn)要介紹了幾種常用方法,并提出了每種方法的優(yōu)點(diǎn)和缺點(diǎn)。
激酶活性分析
蛋白激酶通常是多個(gè)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)網(wǎng)絡(luò)的常見組分,它們影響了眾多負(fù)責(zé)生物反應(yīng)的下游效應(yīng)物,因此,評(píng)估某個(gè)特定激酶的活性可能為平行通路 提供寶貴信息。生物學(xué)樣品中的激酶活性通常是在體外測(cè)定的,在ATP的存在下將免疫沉淀的激酶與外源底物共同孵育。之后通過一些報(bào)告系統(tǒng)來評(píng)估特定激酶對(duì)底物的磷酸化,包括顯色、放射性或熒光檢測(cè)。此外,R&D Systems還提供非放射性的Universal Kinase Activity Kit,能夠定量任何可產(chǎn)生ADP的激酶的活性。盡管我們能夠獲得有關(guān)特定激酶行為的信息,但評(píng)估細(xì)胞提取物中的酶活性僅僅揭開了信號(hào)通路的冰山一角。我們對(duì)蛋白如何被修飾還知之甚少,且體外活性分析也不能說明內(nèi)源磷酸酶活性的潛在作用。磷酸化蛋白的直接檢測(cè)可能為細(xì)胞如何應(yīng)對(duì)外界刺激提供更詳細(xì)的分析,因?yàn)榱姿峄亩蔚蔫b定為蛋白的表達(dá)和功能狀態(tài)提供信息。
磷酸化特異抗體的開發(fā)
直接測(cè)定蛋白磷酸化的一種經(jīng)典方法是將整個(gè)細(xì)胞與放射性標(biāo)記的32P-磷酸鹽共同孵育,獲得細(xì)胞提取物,通過SDS-PAGE分離,并曝光在膠片上。這種繁瑣的方法需要多次幾小時(shí)的孵育,且使用放射性同位素。其他傳統(tǒng)方法包括2D凝膠電泳 ,這種技術(shù)假定磷酸化會(huì)改變蛋白的遷移率和等電點(diǎn)。
鑒于這些方法很費(fèi)力,磷酸化依賴抗體的開發(fā)受到研究人員的極大歡迎。1981年,*個(gè)有記錄的磷酸化抗體在兔子中產(chǎn)生,使用的是鑰孔蟲戚血藍(lán)蛋白(KLH)的苯甲酰磷酸結(jié)合物。這一抗體廣泛地識(shí)別了包含磷酸酪氨酸的蛋白。十年后,利用合成的磷酸化肽段來免疫兔子,開發(fā)出多個(gè)磷酸化狀態(tài)特異抗體,這些磷酸化肽段代表了目標(biāo)蛋白磷酸化位點(diǎn)周圍的氨基酸序列。之后將免疫血清上樣到肽段親和柱中,產(chǎn)生高度特異的免疫試劑 。磷酸化特異抗體的出現(xiàn)為傳統(tǒng)方法的改進(jìn)以及新的免疫分析技術(shù)的開發(fā)打開了大門。在任何技術(shù)中使用磷酸化特異抗體的忠告是,成功的檢測(cè)依賴于抗體與目的磷酸化蛋白的特異性和親和力。
western blot
Western blot是評(píng)估蛋白磷酸化狀態(tài)的zui常用方法,大部分細(xì)胞生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室都擁有開展這些實(shí)驗(yàn)的設(shè)備。利用SDS-PAGE分離生物樣品,隨后轉(zhuǎn)移到膜上(通常是PVDF或尼龍膜),之后利用磷酸化特異的抗體來鑒定目的蛋白。典型的Western blot實(shí)驗(yàn)步驟避免了使用放射性同位素時(shí)的危險(xiǎn)品和廢物處理要求。許多磷酸化特異抗體十分靈敏,可輕松檢測(cè)常規(guī)樣品(如10-30 µg細(xì)胞提取物)中的磷酸化蛋白。由于測(cè)得的磷酸化蛋白水平可能隨處理或凝膠上樣誤差而變化,研究人員常常利用一個(gè)抗體來檢測(cè)同源蛋白的總水平(而不考慮磷酸化狀態(tài)),以確定磷酸化組分相對(duì)于總組分的比例,并充當(dāng)上樣內(nèi)對(duì)照。化學(xué)發(fā)光和顯色法都很常用,而分子量marker常用來提供蛋白分子量的信息。
酶聯(lián)免疫吸附分析(ELISA)
ELISA已逐漸成為測(cè)定蛋白磷酸化的一種有力方法。ELISA的定量能力優(yōu)于Western blot,且在調(diào)節(jié)激酶活性和功能的研究中表現(xiàn)出巨大的作用。這種微孔板形式的分析一般利用目的蛋白特異的捕獲抗體,與磷酸化狀態(tài)無關(guān)。隨后讓目的蛋白結(jié)合在抗體包被的分析板中,目的蛋白可以是純的,也可以是復(fù)雜的異質(zhì)樣品(如細(xì)胞裂解液)中的一個(gè)組分。加入待分析的磷酸化位點(diǎn)特異的檢測(cè)抗體。這些分析通常設(shè)計(jì)為顯色或熒光檢測(cè)。產(chǎn)生的信號(hào)強(qiáng)度與zui初樣品中存在的磷酸化蛋白的濃度成正比。與更為傳統(tǒng)的免疫印跡相比,磷酸化特異的ELISA技術(shù)具有一些優(yōu)點(diǎn)。首先,利用經(jīng)過校準(zhǔn)的標(biāo)準(zhǔn)品,可輕松定量結(jié)果。其次,以三明治形式使用目的蛋白特異的兩個(gè)抗體,帶來了高的特異性。第三,ELISA的靈敏度更高允許使用更少量樣品,檢測(cè)低豐度的蛋白。zui后,微孔板形式的通量比傳統(tǒng)的Western blotting要高得多。ELISA通常帶來了激酶活性的間接測(cè)定。不過,另一類ELISA技術(shù)使用固定化的捕獲抗體、底物和磷酸化底物的檢測(cè)方法,帶來激酶活性的更直接測(cè)定。
基于細(xì)胞的ELISA
盡管體外生物化學(xué)激酶分析(如典型的三明治ELISA)常用于假說檢驗(yàn)和藥物篩選,但它們無法復(fù)制細(xì)胞內(nèi)的環(huán)境。分析完整細(xì)胞內(nèi)的蛋白磷酸化也許能更準(zhǔn)確地代表特定信號(hào)通路網(wǎng)絡(luò)的狀態(tài)。一些免疫分析zui近被開發(fā)出來,能夠在完整細(xì)胞的背景下測(cè)定蛋白磷酸化。細(xì)胞在同一個(gè)孔中被刺激、固定和阻斷。使用磷酸化特異抗體,利用熒光或顯色檢測(cè)系統(tǒng)來評(píng)估磷酸化狀態(tài)。此外,在微孔板的同一個(gè)孔中同時(shí)檢測(cè)磷酸化蛋白和總蛋白。因此,來自目的蛋白的信號(hào)可通過第二種蛋白來標(biāo)準(zhǔn)化,校正各孔之間的差異,實(shí)現(xiàn)磷酸化蛋白水平的準(zhǔn)確評(píng)估,并比較多個(gè)樣品,與傳統(tǒng)免疫印跡中使用磷酸化特異和總蛋白抗體相似。這些分析繞過了制備細(xì)胞裂解液的需要,因此更適合高通量分析。
細(xì)胞內(nèi)流式細(xì)胞術(shù)和ICC/IHC
傳統(tǒng)的細(xì)胞內(nèi)流式細(xì)胞術(shù)和免疫細(xì)胞化學(xué)/免疫組織化學(xué)(ICC/IHC)是檢測(cè)磷酸化事件的有力工具。流式細(xì)胞儀利用激光來激發(fā)用于抗體檢測(cè)的熒光染料。在評(píng)估同一個(gè)細(xì)胞中的多個(gè)蛋白時(shí),必須精心選擇濾光片組合和熒光染料,其光譜不能重疊。流式細(xì)胞術(shù)很有優(yōu)勢(shì),因其實(shí)現(xiàn)了快速、定量的單細(xì)胞分析。通過細(xì)胞表面標(biāo)志的分型可檢測(cè)異質(zhì)群體中特定細(xì)胞類型的蛋白,而無需在物理上分離細(xì)胞。通過這種方法可分析稀有的細(xì)胞群體,而不用擔(dān)心細(xì)胞損失或細(xì)胞分選過程中可能發(fā)生的蛋白表達(dá)變化。
ICC通常指的是利用顯微鏡對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞中的蛋白進(jìn)行檢測(cè),而IHC指的是對(duì)完整組織切片中的蛋白進(jìn)行檢測(cè)。與流式細(xì)胞術(shù)相似,這些技術(shù)實(shí)現(xiàn)了細(xì)胞或組織內(nèi)多個(gè)蛋白的評(píng)估,只是要足夠重視,避免熒光光譜或顏色的重疊。熒光和顯色檢測(cè)技術(shù)都經(jīng)常使用。與監(jiān)控磷酸化的其他形式不同,ICC通常是確定細(xì)胞內(nèi)定位的方法。流式細(xì)胞術(shù)和ICC/IHC都需要高親和力、高特異性的抗體、阻斷步驟、對(duì)照和抗體滴定,以避免因非特異性結(jié)合而帶來的不明確結(jié)果。
通過流式細(xì)胞術(shù)和ICC來檢測(cè)磷酸化蛋白要求蛋白是穩(wěn)定的,且抗體能夠接近。細(xì)胞通常經(jīng)過刺激,并由甲醛或多聚甲醛固定,以交聯(lián)磷酸化蛋白,使其穩(wěn)定,便于分析。固定后的細(xì)胞必須經(jīng)過透化處理,讓磷酸化特異抗體可進(jìn)入細(xì)胞。對(duì)于不同的亞細(xì)胞定位,通常使用不同的透化技術(shù)。溫和的去垢劑可實(shí)現(xiàn)細(xì)胞質(zhì)蛋白的檢測(cè),而抗體要想接近核蛋白,可能需要使用酒精。酒精透化也可增強(qiáng)磷酸化特異抗體的磷酸化蛋白檢測(cè),因酒精具有變性的特點(diǎn)。
質(zhì)譜
復(fù)雜的生物樣品(如細(xì)胞裂解液)中蛋白質(zhì)磷酸化的全面評(píng)估(磷酸化蛋白質(zhì)組學(xué))對(duì)于了解基于磷酸化的信號(hào)網(wǎng)絡(luò)很重要。復(fù)雜的蛋白混合物中大規(guī)模的磷酸化蛋白分析包括磷酸化蛋白和磷酸化肽段的鑒定,以及磷酸化殘基的測(cè)序。質(zhì)譜(MS)技術(shù)是完成這些任務(wù)的有用工具。盡管質(zhì)譜在鑒定單個(gè)蛋白上具有出色的靈敏度和分辨率,但對(duì)于磷酸化蛋白的分析,還有一些固有的困難。首先,磷酸化肽段的信號(hào)通常較弱,因?yàn)樗鼈儙ж?fù)電荷,而電噴霧質(zhì)譜在正電模式下作用,因此電離效果不好。其次,在大量非磷酸化蛋白的高背景之下,很難觀察到低豐度目的蛋白的信號(hào)。為了克服這些缺點(diǎn),人們已經(jīng)開發(fā)出一些富集策略,包括固定化金屬親和層析(IMAC)、磷酸化特異抗體富集、化學(xué)修飾法(如磷酸化絲氨酸和蘇氨酸的β-消去反應(yīng)),以及用生物素化的基團(tuán)取代磷酸基團(tuán)。
多個(gè)分析物圖譜分析
質(zhì)譜技術(shù)如碰撞誘導(dǎo)解離(CID)和電子轉(zhuǎn)移解離(ETD),提供了肽段序列和翻譯后修飾(磷酸化)的全面平行分析。這些技術(shù)相當(dāng)費(fèi)力,而當(dāng)特定通路作為主要研究目標(biāo)時(shí),可能不需要全面的磷酸化分析策略。這導(dǎo)致一些同時(shí)測(cè)定多個(gè)分析物的蛋白磷酸化的新方法被開發(fā)出來。總的來說,這些方法涉及到磷酸化特異抗體的使用,包括基于微孔板、磁珠和膜,基于磁珠和基于膜的檢測(cè)形式。這些分析zui明顯的好處在于通量能力被大大提高,避免了運(yùn)行多個(gè)Western blot或傳統(tǒng)的ELISA分析的需要。這些技術(shù)也能夠提供更多的數(shù)據(jù),而所需的樣品量極少。相應(yīng)地,蛋白圖譜分析通常被認(rèn)為靈敏度不及傳統(tǒng)的對(duì)應(yīng)技術(shù),因潛在的抗體交叉反應(yīng)性。
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